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动物实验常用采血方法

日期:2012-10-23 09:06:15


动物实验常用采血方法


1. 割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛 剪去后消毒,然后浸在 45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾 擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖 0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血 红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口, 割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血 10 余次以上。小 鼠每次可取血 0.1ml,大鼠 0.3~0.5ml。

2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本 法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用 7 号或 8 号注 射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集 10~50mm3。如果 长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。

3.眼眶静脉丛采血 采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部 (大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫 动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接 7 号针头的 1ml 注射器或长颈 (3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径 0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成 45℃的夹 角, 由眼内角刺入, 针头斜面先向眼球, 刺入后再转 180 度使斜面对着眼眶后界。 刺入浓度,小鼠约 2~3mm,大鼠约 4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时, 将针退出约 0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得 到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿 刺孔出血。 若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮 换更好。体重 20-25g 的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml;体重 200-300g 大鼠每次可 采血 0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。

4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤, 并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约 1/2-4/5 的颈部前剪断,让 血自由滴入盛器。小鼠可采用约 0.8~1.2ml;大鼠约 5-10ml。

5.心脏采血 鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体 采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔, 暴露心脏, 用针头刺入右心室, 吸取血液。 小鼠约 0.5-0.6ml; 大鼠约 0.8-1.2ml。

6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈 静脉充分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎, 向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血 最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上,

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