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不同动物的采血方法

日期:2012-10-17 10:48:17

不同试验动物的采血方法

 (一)小鼠、大鼠采血法

1.割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在 45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖 0.3-0.5cm, 让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取, 采血结束, 伤口消毒并压迫止血。 也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血 10 余 次以上。小鼠每次可取血 0.1ml,大鼠 0.3~0.5ml。

2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水 擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用 7 号或 8 号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针 头时即有血滴出,一次可采集 10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以 后再逐渐向近心端穿刺。

3.眼眶静脉丛采血 采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部 (大鼠 采血需带上纱手套) 应防止动物窒息。 , 当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧, 使眶后静脉丛充血。右手持续接 7 号针头的 1ml 注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛 细管内径 0.5-1.0mm) 使采血器与鼠面成 45℃的夹角, , 由眼内角刺入, 针头斜面先向眼球, 刺入后再转 180 度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约 2~3mm,大鼠约 4~5mm。当感 到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约 0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然 流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防 止术后穿刺孔出血。 若技术熟练, 用本法短期内可重复采血均无多大困难。 左右两眼轮换更好。 体重 20-25g 的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml; 体重 200-300g 大鼠每次可采血 0.5-1.0ml, 可适用于某些生 物化学项目的检验。

4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾 的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约 1/2-4/5 的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用 约 0.8~1.2ml;大鼠约 5-10ml。

5.心脏采血 鼠类的心脏较小, 且心率较快, 心脏采血比较困难, 故少用。 活体采血方法与豚鼠相同。 若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸 取血液。小鼠约 0.5-0.6ml;大鼠约 0.8-1.2ml。

6.颈动静脉采血
先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充分暴露,可用注射 器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动

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